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文章：
在试验条件下检测猪唾液中的猪繁殖与呼吸综合征病毒。John Prickett, Robert Simer, Jane Christopher-Hennings, Kyoung-Jin Yoon, Richard B. Evans and Jeffrey J. Zimmerman. J VET Diagn Invest 2008 20: 156 DOI: 10.1177/104063870802000203
文章简介：
文章研究的内容是什么?
本研究的目的是：确定猪唾液中（OF）是否存在PRRSV 或PRRSV抗体，PRRSV 或PRRSV抗体在唾液中的存活时间，及猪龄对其的影响。
试验如何进行?
选取48头未感染 PRRSV的猪，按周龄分成3组：4、8和12周龄。每组16头猪，其中12头在0日龄肌肉注射PRRSV，其余 4头作对照。接种PRRSV病毒后（接种后0-63天），收集猪的血清、口腔拭子和唾液，进行qRT-PCR 、ELISA和 IFAT分析。
接种病毒后0-61天，收集每个猪栏（4或6头猪）的唾液样品，每周两次。每个猪栏都挂一根棉线。
试验结果是什么?
在猪血清和OF中都检测到PRRSV。猪龄对唾液中的病毒量或病毒存活时间没有影响（表1是qRT-PCR的检测结果）。ELISA 和 IFAT检测到病毒抗体，但抗体水平很低。
表1.实时qRT-PCR检测唾液、血清和口腔拭子的分类结果
| 猪栏结果 | 个体结果 | ||||
| 猪栏唾液样品 | 血清 | 血清 | 口腔拭子 | ||
| 周 | 试验 A | 试验 B | 试验 A | 试验 A | 试验 A |
| 1 | 8 (100%) | 8 (100%) | 8 (100%) | 35 (97%) | 7 (20%) |
| 2 | 7 (88%) | 8 (100%) | 8 (100%) | 36 (100%) | 3 (8%) |
| 3 | 6 (75%) | 4 (50%) | 8 (100%) | 32 (89%) | 2 (6%) |
| 4 | 7 (88%) | 6 (75%) | 7 (88%) | 18 (50%) | N/A |
| 5 | 2 (25%) | 3 (38%) | 6 (75%) | 10 (28%) | N/A |
| 6 | 0 | 3 (38%) | 6 (75%) | 12 (33%) | N/A |
| 7 | 1 (13%) | 1 (13%) | 5 (63%) | 7 (19%) | N/A |
| 9 | 0 | 0 | 3 (38%) | 5 (14%) | N/A |
下图是接种病毒后几周，qRT-PCR检测猪血清和OF中PRRSV的结果，结果表明：在PRRSV检测中，血清和唾液的相关性很高。
图1.接种后几周血清和唾液qRT-PCR检测结果
本文的结论是什么?
兽医很少使用唾液诊断。但是本实验的结果表明：在猪群中，采集猪栏内的唾液是检测PRRSV的一种简单、实用、成本低廉的方法。
用qRT-PCR检测唾液样品中PRRSV大约需要4周。
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在PRRS阳性猪场很难控制该病毒。虽然我们有疫苗，但它有一定的效用范围，因此不能只靠疫苗控制病毒。正确管理（其中最重要的是严格的批次管理）后备母猪是控制PRRS的关键因素，但这所有的措施都是防止病毒在猪场内部传播。 如何确保措施实施后的效果和我们预期的一样呢？虽然检测唾液中PRRS病毒及其抗体对于控制猪场疾病的作用很大，但是通过唾液分析一头猪的PRRS状况是不可能（我们分析的是一个猪栏内的猪），在猪生产中，当我们要建立一个种群的动态感染时，这是很有用的。原因是一个结果代表多个样品的结果。并且该方法中猪的数量大，采样容易，检测频率高，结果代表性高。 那什么时候使用OF诊断合适呢？为了确保在分娩季引入后备母猪前，它们已形成抗病毒性（ELISA-positive），能够克服病毒血症（PCR-negative），可以在替补时设置控制点，即在引入后备母猪时或引入后备母猪后。也可以在不同的生产批次设控制点。在猪场，PRRSV感染不是静态的，我们的活动能产生积极的效果，改变感染动力学。例如，采用严格的控制措施，越推后病毒感染，控制间接感染（来自上一批次）就越重要。本文中的唾液诊断要求我们增加控制的频率，控制亚种群风险，如猪场常发生的生长速率低。 |
